Чувствительность северокавказской и белорусской популяций Microdochium nivale (Fr.) Samuels & hallet к фунгицидам

Розовая снежная плесень (возбудитель Microdochium nivale) – наиболее распространенный во всем мире низкотемпературный патоген. Изучена чувствительность двух географически отдаленных популяций возбудителя розовой снежной плесени (юга России и Республики Беларусь) к девяти современным фунгицидам. Для исследования отобраны фунгициды, включенные в Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации и рекомендуемые для обработки против снежной плесени. Материалом для изучения служила чистая культура гриба M. nivale. В исследовании использован метод агаровых блоков. Внесение растворов фунгицидов в питательную среду осуществляли двумя стандартными методами – вмешиванием в среду и растиранием препарата по поверхности среды шпателем. Выявлены препараты, обладающие 100%-м фунгицидным действием против обеих изучаемых популяций: Поларис, МЭ, Кинто Дуо, КС и Баритон Супер, КС. Препараты Оплот Трио, ВСК, Вайбранс Трио, ТКС, Максим Форте, КС показали 100%-ю эффективность только против белорусской популяции патогена. Определено, что применение двух методов внесения препарата в питательную среду (вмешивание и растирание по поверхности агара) имеет высокий коэффициент корреляции (для белорусской популяции – r_xy= 1,0, для северокавказской – r_xy= 0,99). Однако вмешивание меньше ингибирует рост колоний, поэтому является более предпочтительным в исследованиях по изучению чувствительности к препаратам чистой культуры гриба M. nivale. Выявлена статистически достоверная разница между чувствительностью к фунгицидам популяций географически отдаленных регионов (при использовании метода вмешивания F_t 5,32 < F_f 23,2, метода растирания – F_t 5,32 < F_f 37,7). Данные свидетельствуют о гетерогенности возбудителя снежной плесени по чувствительности к современному ассортименту протравителей семян.

1. Gagkaeva T.Y., Orina A.S., Gavrilova O.P., Gogina N.N. Evidence of Microdochium fungi associated with cereal grains in Russia // Microorganisms. 2020. N 3. С. 340. DOI: 10.3390/microorganisms8030340.

2. Жуковский А.Г., Крупенько Н.А., Буга С.Ф. Особенности действия протравителей в оздоровлении посевов озимых зерновых культур в условиях Беларуси // Вестник защиты растений. 2019. № 4. С. 28–35. DOI: 10.31993/2308-6459-2019-4-102-28-35.

3. Gorshkov V., Osipova E., Ponomareva M., Ponomarev S., Gogoleva N., Petrova O., Korzun V. Rye Snow Mold-Associated Microdochium nivale Strains Inhabiting a Common Area: Variability in Genetics, Morphotype, Extracellular Enzymatic Activities, and Virulence // Journal of Fungi. 2020. N 4. P. 335. DOI: 10.3390/jof6040335.

4. Ponomareva M.L., Gorshkov V.Y., Ponomarev S. N., Korzun V., Miedaner T. Snow mold of winter cereals: A complex disease and a challenge for resistance breeding // Theoretical and Applied Genetics. 2021. № 2. P. 419–433. DOI: 10.1007/s00122-020-03725-7.

5. Чекмарев В.В. Гриб Microdochium nivale и эффективные фунгициды для контроля его развития // Colloquium-journal. 2020. № 5 (57). C. 53–54. DOI: 10.24411/2520-6990-2020-11395.

6. Lucas J.A., Hawkins N.J., Fraaije B.A. The evolution of fungicide resistance // Advances in applied microbiology. 2015. N 90. P. 29–92. DOI: 10.1016/bs.aambs.2014.09.001.

7. Pennucci A., Beevet R.E., Laracy E.P. Dicarboximide-resistant strains of Microdochium nivale in New Zealand // Australasian Plant Pathology. 1990. N 2. P. 38–41.

8. Walker A.S., Auclair C., Gredt M., Leroux P. First occurrence of resistance to strobilurin fungicides in Microdochium nivale and Microdochium majus from French naturally infected wheat grains // Pest Management Science: formerly Pesticide Science. 2009. N 8. P. 906–915. DOI: 10.1002/ps.1772.

9. Гаврилова О.П., Орина А.С., Гагкаева Т.Ю., Усольцева М.Ю. Эффективность подавления фунгицидами роста грибов p. Microdochium – возбудителей снежной плесени злаков // Защита и карантин растений. 2021. № 4. С. 17–20. DOI: 10.47528/1026$8634_2021_4_17.

10. Bulat S. UP-PCR analysis and ITS1 ribotyping of strains of Trichoderma and Gliocladium // Mycological Research. 1998. N 102. P. 933–943.

11. Nielsen L.K. Microdochium nivale and Microdochium majus in seed samples of Danish small grain cereals // Crop Protection. 2013. N 43. P. 192–200. DOI: 10.1016/j.cropro.2012.09.002.

12. Selyutina O.Y., Khalikov S.S., Polyakov N.E. Arabinogalactan and glycyrrhizin based nanopesticides as novel delivery systems for plant protection // Environmental Science and Pollution Research. 2020. N 27. P. 5864–5872. DOI: 10.1007/s11356-019-07397-9.

13. Белицкая М.Н., Грибуст И.Р., Байбакова Е.В., Нефедьева Е.Э., Шайхиев И.Г. Исследование и сравнительный анализ действующих веществ современных протравителей зерновых культур // Вестник Казанского технологического университета. 2015. № 9. С. 32–36.

14. Bersching K., Jacob S. The Molecular Mechanism of Fludioxonil Action Is Different to Osmotic Stress Sensing // Journal of Fungi. 2021. N 7 (5). P. 393. DOI: 10.3390/jof7050393.

15. Zeun R., Scalliet G., Oostendorp M. Biological activity of sedaxane a novel broad-spectrum fungicide for seed treatment // Pest management science. 2013. N 69 (4). P. 527–34. DOI: 10.1002/ps.3405.