Совершенствование элементов технологии клонального микроразмножения малины разного типа плодоношения

Представлены результаты исследований по клональному микроразмножению 17 сортов малины алтайской и европейской селекции. В последнее время исследователи уделяют внимание созданию универсальной питательной среды, которая в равной степени подходила бы для любого сорта определенного вида растений. Особенно это важно при массовом клональном микроразмножении в производственных питомниках. Проведена оценка регенерационного потенциала сортов малины разного типа плодоношения на каждом этапе размножения. На этапе собственно микроразмножения выявлено, что среда Драйвера и Куниюки в нашей модификации превосходила среду Мурасиге и Скуга по длине побегов и составила в среднем 9,0 мм для сортов обычного типа и 12,3 мм для ремонтантных. Это позволило исключить дополнительный этап элонгации микропобегов. Также на новой среде улучшился внешний вид микропобегов. Установлено, что для малины независимо от ее типа оптимальные концентрации регуляторов роста лежат в следующем диапазоне: цитокинин 6-бензиламинопурин (БАП) 2,5–3,5 мкМ совместно с ауксином ß-индолилмасляной кислотой (ИМК) 0,5–0,7 мкМ. На этапе ризогенеза лучшие результаты показала среда Драйвера и Куниюки с пониженным в 2 раза содержанием всех основных компонентов и с добавлением 2,0 мкМ ИМК при длительности пассажа 21 день. После этого все микрочеренки с корнями и без корней проходили этап адаптации – доращивания в нейтральных субстратах в течение 56 дней в условиях ex vitro вегетационной комнаты. В большинстве случаев не отмечено статистически достоверных различий по длине и количеству листьев независимо от наличия или отсутствия корней на начальной стадии адаптации. К концу этого этапа получено 100% адаптированных растений малины обычного типа плодоношения и 98% – ремонтантного.

1. Linck H., Lankes Ch., Krüger E., Reineke A. Elimination of phytoplasmas in rubus mother plants by tissue culture coupled with heat therapy // Plant Disease. 2019. Vol. 103. N 6. DOI: 10.1094/PDIS08-18-1372-RE.

2. Егоров Е.А., Шадрина Ж.А., Кузнецова А.П., Ефимова И.Л., Кочьян Г.А. Организация технологических процессов производства посадочного материала плодовых культур: монография. Краснодар: Северо-Кавказский федеральный научный центр садоводства, виноградарства, виноделия, 2019. 243 с.

3. Georgieva M., Kondakova V., Yancheva S. A comparative study on raspberry cultivars in micropropagation // Bulgarian Journal of Agricultural Science. 2020. Vol. 26. N 3. P. 527–532.

4. Kornatskiy S.A. New approaches to micropropagation of raspberry // Acta Horticulturae. 2020. Vol. 1285. P. 113–116. DOI: 10.17660/ActaHortic.2020.1285.18.

5. Clapa D., Harta M., Pop C.V. Micropropagation of raspberries (Rubus idaeus L.) in liquid media by temporary immersion bioreactor in comparison with gelled media // Bulletin of university of agricultural sciences and veterinary medicine Cluj-Napoca. Horticulture. 2021. Vol. 78. Is. 2. P. 56–62. DOI: 15835/buasvmcn-hort:2021.0040.

6. Лупин М.В., Богомолова Н.И. Актуальные направления селекции малины, российские и мировые достижения // Современное садоводство. 2019. № 4. С. 102–112. DOI: 10.24411/2312-6701-2019-10410.

7. Иванова-Хаина Л.В. Влияние гормонального состава питательной среды на интенсивность роста ежевики in vitro // Ученые записки Крымского университета им. В.И. Вернадского. Биология. Химия. 2018. Т. 4 (70). № 4. С. 51–59.

8. Topçu H. Optimal propagation and rooting mediums in rubus spp. by in vitro micropropagation // International Journal of Innovative Approaches in Agricultural Research. 2022. Vol. 6. N 3. P. 205– 217. DOI: 10.29329/ijiaar.2022.475.4.

9. Khamurzaev S.M., Bamatov I.M., Butsaeva E.M., Sibiryatkin S.V. The use of the Driver-Kuniyuki nutrient medium for micropropagation of rootstocks of LC-52 (Cerasus vulgaris × Ctrasus fruticose) and Guzela 6 (Persica vulgaris × Cerasuscanescens) stone fruit crops // Journal of Experimental Biology and Agricultural Sciences. 2018. Vol. 6. N 3. P. 623–627. DOI: 10.18006/2018.6(3).623.627.

10. Плаксина Т.В., Гусев Д.А. Использование среды Драйвера и Куниюки (Driver & Kuniyuki Walnut medium) для микроразмножения сортов малины красной // Достижения науки и техники АПК. 2021. Т. 35. № 9. С. 19–24. DOI: 10.53859/02352451_2021_35_9_19.

11. Гусев Д.А., Плаксина Т.В. Развитие микрорастений сортов малины (Rubus idaeus L.) алтайской селекции на этапах ризогенеза in vitro и адаптации ex vitro // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2022. № 9 (215). С. 31–36. DOI: 10.53083/1996-42772022-215-9-31-36.

12. Lebedev V., Arkaev M., Dremova M., Pozdniakov I., Shestibratov K. Effects of growth regulators and gelling agents on ex vitro rooting of raspberry // Plants. 2019. Vol. 8. N 3. DOI:10.3390/plants8010003.

13. Трунов И.А., Хорошкова Ю.В. Оптимизация условий роста микрорастений садовых культур на этапе адаптации // Вестник Мичуринского государственного аграрного университета. 2020. № 1 (60). С. 90–97.

14. Матушкина О.В., Пронина И.Н., Матушкин С.А., Кружкова Л.В. Модифицированные элементы технологии размножения садовых культур in vitro // Плодоводство и ягодоводство в России. 2020. Т. 61. С. 44–53. DOI: 10.31676/2073-4948-2020-61-44-53.