Анализ биоразнообразия гемиптерофауны (Hemiptera) Западной Сибири для поиска потенциальных энтомофагов

Проанализирован видовой состав хищных клопов (Hemiptera), обитающих на территории Западной Сибири. В обзор гемиптерофауны включены зоофитофаги и зоофаги, имеющие значение в ограничении численности вредных членистоногих. По приблизительным оценкам в условиях региона семейства клопов, представители которых ведущих хищнический образ жизни, включают следующие виды: Nabidae – 27, Anthocoridae – 32, Reduviidae – 27, Miridae – 86, Lygaeidae – 24, Pentatomidae – 10. Три семейства клопов представляют особый интерес с точки зрения биологического контроля – Nabidae, Anthocoridae и Miridae. В число наиболее перспективных видов для Западной Сибири входят Nabis (Nabis) ferus, Nabis (Nabis) punctatus, Nabis (Nabis) brevis, Nabis (Dolichonabis) limbatus, Nabis (Nabicula) flavomarginatus, Himacerus (Hi macerus) apterus; Orius majusculus, Orius (Heterorius) laticolis subsp. laticolis , Orius (Heterorius) minutus, Anthocoris confusus, Anthocoris nemorum, Elatophilus nigrellus, Temnostethus (Temnos tethus) gracilis, Orius (Heterorius) horvathi, Orius (Heterorius) vicinus, род Xylocoris; Dicyphus (Brachyceroea) globulifer, Dicyphus orientalis, Dicyphus (Dicyphus) stachydis. Меньшим видовым разнообразием перспективных для биологической защиты растений видов на территории Западной Сибири отличаются семейства Pentatomidae и Reduviidae: Arma custos, Troilus luridus, Rhacognathus punctatus, Zicrona caerulea, Picromerus bidens, Jalla dumosa, Jalla subcalcarata; Pygolampis bidentata, Coranus spiniscutis, Rhynocoris (Rhynocoris) iracundus. Отмечено, что сведения о встречаемости и эффективности большинства видов крайне ограничены. По отдельным видам приведены данные о возможности их лабораторного содержания и использования в качестве агентов биологической защиты растений.

1. Шаталова Е.И., Ульянова Е.Г., Кривошеи на Н.И., Андреева И.В. Живые энтомологические коллекции: особенности поддержания, использование в научных, учебных и практических целях // Концептуальные и прикладные аспекты научных исследований и образования в области зоологии беспозвоночных. Томск, 2020. С. 210–213.

2. Henry T.J. Biodiversity of Heteroptera. In: Foot tit R.G., Adler P.H. eds. Insect biodiversity: Science and society. Oxford: Wiley-Blackwell. 2009. P. 223–263.

3. Винокуров Н.Н., Канюкова Е.В., Голуб В.Б. Каталог полужесткокрылых насекомых (Heteroptera) Азиатской части России. Новосибирск: Наука, 2010. 320 с.

4. Golub V.B., Vinokurov N.N., Golub N.V., Sobole va V.A., Aksenenko E.V. True bugs (Hemiptera: Heteroptera) from the taiga zone of the moun tainous Altai of Russia: the first records and new data on rare species // Ecologica Montenegrina. 2021. Vol. 40. P. 164–175.

5. Есенбекова П.А. Полужесткокрылые (Heteroptera) Казахстана: монография. Алматы: Нур-Принт, 2013. 349 с.

6. Бокина И.Г. Клопы-набиды (heteroptera, nabidae) в агроценозах зерновых культур лесостепи Западной Сибири // Зоологический журнал. 2013. Т. 92. №. 4. C. 450–456.

7. Бокина И.Г. Злаковые тли (Heteroptera: Aphi didae) и хищные клопы (Heteroptera: Nabidae, Anthocoridae) при разных технологиях возделывания яровой пшеницы в условиях север ной лесостепи Западной Сибири // Евразиатский энтомологический журнал. 2018. Т. 17. № 1. C. 1–10.

8. Lee H., Kim J., Lim J., Jung S. Taxonomic review of the subfamily Prostemmatinae (Hemiptera: Heteroptera: Cimicomorpha: Nabidae) from the Korean Peninsula // Journal of Asia-Pacific Bio diversity. 2020. Vol. 13. P. 29–34.

9. Кенжегалиев А.М., Есенбекова П.А. Хищные полужесткокрылые (Heteroptera: Nabidae, anthocoridae) Юго-Восточного Казахстана // Current issues, achievements and prospects of Science and education. Athens, Greece. 2021. P. 36.

10. Roth S., Janssen A., Sabelis M.W. Odour-mediated sexual attraction in Nabids (Heteroptera: Nabidae) // European Journal of Entomology. 2008. Vol. 105. P. 159–162.

11. Fernandez F.J., Gamez M., Garay J., Cabello T. Do Development and Diet Determine the Degree of Cannibalism in Insects? To Eat or Not to Eat Conspecifics // Insects. 2020. Vol. 11. P. 242.

12. Cabello T., Gallego Granados J., Fernan dez-Maldonado F., Soler A., Beltran D., Par ra A., Vila E. The damsel bug Nabis pseudoferus (Hem.: Nabidae) as a new biological control agent of the South American Tomato Pinworm, Tuta absoluta (Lep.: Gelechiidae), in tomato crops of Spain // Bulletin IOBC/WPRS. 2009. Vol. 49: P. 219–223.

13. Mohammadpour M., Hosseini M., Michaud J.P., Karimi J., Hosseininaveh V. The life history of Nabis pseudoferus feeding on Tuta absoluta eggs is mediated by egg age and parasitism status // Biological Control. 2020. Vol. 151. P. 104401. DOI: 10.1016/j.biocontrol.2020.104401.

14. Пазюк И.М., Васильев А.Л. Оценка применения диапаузирующей трихограммы Tricho gramma telengae (Hymenoptera, Trichogram matidae) в яйцах зерновой моли Sitotroga cerealella (Lepidoptera, Gelehiidae) в качестве корма при разведении хищного клопа Orius laevigatus (Hemiptera, Anthocoridae) // Вестник защиты растений. 2017. Т. 2 (92). C. 45–49.

15. Sepahvand Z., Seraj A.A., Rajabpour A., Kochei li F. Biodiversity of minute pirate bugs (Hemip tera: Anthocoridae) in agricultural and natural habitats of Lorestan province, west Iran // Ira nian Journal of Animal Biosystematics. 2019. Vol. 15 (1). P. 87–98.

16. Фоминых Т.С., Пазюк И.М., Медведева К.Д. Оценка возможности применения хищных клопов (Hemiptera: Heteroptera) против тлей, пере носчиков вирусной инфекции на семенном картофеле в теплицах // Защита картофеля. 2020. № 1. С. 31–32. DOI: 10.13057/biodiv/d200439.

17. Шаталова Е.И., Кривошеина Н.И. Полужесткокрылые как источник перспективных видов для биологической защиты растений в условиях Западной Сибири // Новейшие направления развития аграрной науки в работах молодых ученых. Краснообск, 2021. С. 85.

18. Wang T., Zhang P., Ma C., Yasir Ali M., Gao G., Lu Z., Zalucki M.P. Is Orius sauteri Poppius a Promising Biological Control Agent for Walnut Aphids? An Assessment from the Laboratory to Field // Insects. 2021. Vol. 12 (1). P. 25. DOI: 10.3390/insects12010025.

19. Sigsgaard L. Oviposition preference of Antho- coris nemorum and A. nemoralis for apple and pear // Entomologia Experimentalis et Applicata. 2004. Vol. 111. P. 215–223.

20. Sigsgaard L. Prey preferences of Anthocoris nemoralis and A. nemorum (Heteroptera: An thocoridae) and their predation behaviour to wards // Pear psyllid, Cacopsylla pyri. IOBC/ wprs Bulletin. 2005. Vol. 28 (7). P. 225–228.

21. Rodrigo E., Catalá-Oltra M., Pérez-Laorga E., Baena M. Monitoring of Matsucoccus feytau di (Hemiptera: Matsucoccidae) and its natural enemies in Spain using sticky tapes and phe- romone traps // European Journal of Entomolo gy. 2013. Vol. 110. P. 301–310. DOI: 10.14411/eje.2013.043.

22. Винокуров Н.Н., Голуб В.Б. Новые данные по фауне полужесткокрылых (Heteroptera) Сибири // Евроазиатский энтомологический журнал. 2016. Т. 15. № 4. С. 349–353.

23. Saulich A.Kh., Musolin D.L. Seasonal development and ecology of Anthocorids (Heterop tera, Anthocoridae) // Entomological Review. 2009. Vol. 88 (2). P. 257–291. DOI: 10.1134/S0013873809050017.

24. Çerçi B., Koçak Ö., Tezcan S. Two new species and ten new records of Heteroptera from Turkey, including the first record of the potential alien Campylomma miyamotoi in the Western Pa laearctic // Acta Entomologica Musei Nationalis Pragae. 2019. Vol. 59. P. 295–306. DOI: 10.2478/aemnp-2019-0023.

25. Razavi N., Ahmadi K. Compatibility assessment between four ethanolic plant extracts with a bug predator Orius horvathi (Reuter) (Heteroptera: Anthocoridae) used for controlling the western f lower thrips Frankliniella occidentalis (Pergan de) (Thysanoptera: Thripidae) // Journal of Plant Protection Research. 2016. Vol. 56 (1). P. 89–94. DOI. 10.1515/jppr-2016-0015.

26. He Z., Guo J-F., Reitz S.R., Lei Z-R., Wu S-Y. A global invasion by the thrips, Frankliniella occidentalis: Current virus vector status and its management // Insect Science. 2020. Vol. 27. P. 626–645. DOI: 10.1111/1744-7917.12721.

27. Kernasa O., Kaewpradit A., Suasa-ard W. Mass-rearing techniques of predatory antho- corid, Orius minutus (L.) (Hemiptera: Anthoco ridae) // The 46th Kasetsart University Annual Conference. Bangkok. Thailand, 2008. P. 46–51.

28. Pehlivan S. Predatory Orius (Hemiptera: An thocoridae) species in Adana province, their population fluctations with thrips (Thysanop tera) species on summer vegetables, and some biological characteristics of Orius vicinus (Rib aut) at laboratory conditions: Dissertation, Tur key: University of Çukurova, 2019.

29. Alınç T., Atakan E., Pehlivan S. Overwintering biology of the predatory bug, Orius vicinus (ri baut) (Hemiptera: Anthocoridae) under outdoor conditions in the Eastern Mediterranean region of Turkey // Phytoparasitica. 2021. Vol. 49. P. 579–587. DOI: 10.1007/s12600-021-00889-w.

30. Donnelly B.E. Prey Utilization and Laboratory Rearing of Xylocoris flavipes (Reuter) (Hemip tera: Anthocoridae). Thesis, Oklahoma State University, USA, 2000. 31. Sarker A.C., Islam W., Parween S. Developmen tal parameters of Xylochoris flavipes (Reuter) (Hemiptera: Anthocoridae) fed on life-stages of Rhyzopertha dominica (F.) // Journal of Bio-Sci ence. 2019. Vol. 27. P. 11–21. DOI: 10.3329/jbs.v27i0.44667.

31. Пазюк И.М., Фоминых Т.С., Медведева К.Д. К вопросу о способности хищных клопов зоофитофагов переносить вирусы картофеля при применении их для биологической защиты от вредителей – переносчиков вирусов // Биологическая защита растений – основа стабилизации агроэкосистем. Краснодар, 2018. С. 272– 274.

32. Пазюк И.М., Биницкая Н.В. Лабораторная оценка пригодности хищных клопов Orius laevigatus и Orius majusculus в качестве энтомофагов для использования на семенном картофеле в теплицах // Вестник защиты растений. 2020. Т. 103 (4). C. 274–276. DOI: 10.31993/2308-6459-2020-103-4-13984.

33. Pérez-Hedo M., Riahi C., Urbaneja A. Use of zoophytophagous mirid bugs in horticultur al crops: Current challenges and future per spectives // Pest Management Science. 2021. Vol. 77 (1). P. 33–42.

34. Bouagga S., Urbaneja A., Rambla J.L., Flors V., Granell A., Jaques J.A., Pérez-Hedo M. Zoophytophagous mirids provide pest control by inducing direct defences, antixenosis and attraction to parasitoids in sweet pepper plants // Pest Management Science. 2018. Vol. 74. P. 1286–1296. DOI: 10.1002/ps.4838.

35. Fan S., Chen C., Zhao Q., Wei J., Zhang H. Iden tifying Potentially Climatic Suitability Areas for Arma custos (Hemiptera: Pentatomidae) in China under Climate Change // Insects. 2020. Vol. 11. P. 674. DOI: 10.3390/insects11100674.

36. Zou D.Y., Wu H.H., Coudron T.A., Zhang L.S., Wang M.Q., Liu C.X., Chen H.Y. A meridic diet for continuous rearing of Arma chinensis (He miptera: Pentatomidae: Asopinae) // Biologi cal Control. 2013. Vol. 67. P. 491–497. DOI: 10.1016/j.biocontrol.2013.09.020.

37. Gözüaçık C., Yiğit A. Effects of the Plants Diver sity on Egg Parasitoids of Sunn pest and Alterna tive Hosts in South-East Region from Turkey // Journal of Agricultural, Food and Environmental Sciences. 2016. Vol. 67. P. 68–74.

38. Ramsay A.J. Habitat preference and distribu tion of Rhacognathus punctatus (Hemiptera: Pentatomidae) in Wales // British Journal of Entomology and Natural History. 2013. Vol. 26. P. 91–94.

39. Paiero S. Does it make scents? Making a case for the extirpation, and possibly extinction, of the native stink bug Rhacognathus ameri canus (Pentatomidae: Asopinae) // The Journal of the Entomological Society of Ontario. 2019. Vol. 150. P. 37–45.

40. Агасьева И.С., Исмаилов В.Я., Нефедова М.В., Федоренко Е.В. Видовой состав и биорегуляторная активность энтомофагов в системе управления численностью вредителей картофеля (Solanum tuberosum L.) // Сельскохозяйственная биология. 2016. Т. 51 (3). P. 401–410. DOI: 10.15389/agrobiology.2016.3.401rus.

41. Musolin D.L., Saulich A.H. Summer dormancy ensures univoltinism in the predatory bug Pi cromerus bidens // Entomologia Experimentalis et Applicata. 2000. Vol. 95 (3). P. 259–267. DOI: 10.1023/A:1004048412396.

42. Mahdian K., Kerckhove J., Tirry L., De Clerc P. Effects of diet on development and reproduction of the predatory pentatomids Picromerus bidens and Podisus maculiventris // BioControl. 2006. Vol. 51. P. 725. DOI: 10.1007/s10526-005-5253-3.

43. Volkov O.G., Meshkov Y.I., Yakovleva I.N. De velopment and Predation of Picromerus bidens (Hemiptera: Pentatomidae) on Leptinotarsa de cemlineata (Coleoptera: Chrysomelidae) // Rus sian Entomological Journal. 2013. Vol. 22 (1). P. 43–50.

44. Sahayaraj K., Balasubramanian R. Artificial Rearing of Reduviid Predators for Pest Manage ment // Reduviid: An Important Biological Con trol Agent. Springer, Singapore. 2016. P. 180.

45. Zhou H., Yu Y., Tan X., Chen A., Feng J. Biolo- gical control of insect pests in apple orchards in China // Biological Control. 2014. Vol. 68. P. 47 56. DOI: 10.1016/j.biocontrol.2013.06.009.

46. Claver M., Reegan A.D. Biology and mating be haviour of Coranus spiniscutis Reuter (Hemip tera: Reduviidae), a key predator of rice gandhi bug Leptocorisa varicornis Fabricius // Journal of Biopesticides. 2010. Vol. 3 (2). P. 437. DOI: 10.57182/jbiopestic.3.2.437-440.

47. Mendoza J.E., Balanza V., Rodríguez-Gómez A. Enhanced biocontrol services in artificially se lected strains of Orius laevigatus // Journal of Pest Science. 2022. Vol. 95. P. 1597–1608. DOI: 10.1007/s10340-022-01539-8.

48. Ivezić A., Trudić B., Draškić G., Zorić M. Preda tory mirid Nesidiocoris tenuis (Heteroptera: Mi ridae) as biological control agent in greenhouse tomato production // Journal of Central Europe an Agriculture. 2023. Vol. 24 (1). P. 151–161. DOI: 10.5513/JCEA01/24.1.3718.

49. Roda A., Castillo J., Allen C., Urbaneja A., Pérez-Hedo M., Weihman S., Stansly P.A. Bi ological Control Potential and Drawbacks of Three Zoophytophagous Mirid Predators against Bemisia tabaci in the United States // Insects. 2020. Vol. 11 (10). P. 670. DOI: 10.3390/insects11100670.

50. Plata-Rueda A., Martínez L.C., Zanuncio J.C., Serrão J.E. Advances zoophytophagous stink bugs (Pentatomidae) use in agroecosystems: biology, feeding behavior and biological con trol // Journal of Pest Science. 2022. Vol. 95 (4). P. 1485–1500. DOI: 10.1007/s10340-02201518-z.

51. Saito T., MacDonald C.M., Buitenhuis R. Pre dation potential and life history of three nabid species as biological control agents of pests in Canadian Greenhouses // Biological Control. 2023. Vol. 186. P. 105335. DOI: 10.1016/j.biocontrol.2023.105335.

52. Saito T., Buitenhuis R. Integration of the Gen eralist Predator Nabis americoferus (Hemiptera: Nabidae) in a Greenhouse Strawberry Biocon trol Program with Phytoseiid Predatory Mites and the Entomopathogenic Fungus Beauveria bassiana // Insects. 2024. Vol. 15 (1). P. 52. DOI: 10.3390/insects15010052.

53. Ambrose D.P., Kumar A.G. Reduviid predators // Ecofriendly pest management for food security. 2016. P. 217–257.

54. Tomson M., Sahayaraj K., Kumar V., Avery P.B., McKenzie C.L., Osborne L.S. Mass rearing and augmentative biological control evaluation of Rhynocoris fuscipes (Hemiptera: Reduviidae) against multiple pests of cotton // Pest manage ment science. 2017. Vol. 73 (8). P. 1743–1752. DOI: 10.1002/ps.4532.

55. Ulyanova E., Andreeva I., Shatalova E. The spe cies composition of herbivorous acarofaunain the south of Western Siberia // Persian Journal of Acarology. 2022. Vol. 11 (2). P. 365–370. DOI: 10.22073/pja.v11i2.72456.

56. Grundy P.R. Utilizing the assassin bug, Pristhe sancus plagipennis (Hemiptera: Reduviidae), as a biological control agent within an integrated pest management programme for Helicoverpa spp. (Lepidoptera: Noctuidae) and Creontiades spp. (Hemiptera: Miridae) in cotton // Bulletin of Entomological Research. 2007. Vol. 97 (3). P. 281–290. DOI: 10.1017/S0007485307004993.

57. Vandervoet T.F., Ellsworth P.C., Carrière Y., Naranjo S.E. Quantifying conservation biolo- gical control for management of Bemisia taba ci (Hemiptera: Aleyrodidae) in cotton // Journal of Economic Entomology. 2018. Vol. 111 (3). P. 1056–1068. DOI: 10.1093/jee/toy049.

58. Sobhy I.S., Abdul-Hamid A.M., Sarhan A.A., Shoukry A.A., Mandour N.S., Reitz S.R. Life his tory traits of Blaptostethus pallescens (Hemip tera: Anthocoridae), a candidate for use in aug mentative biological control in Egypt // Applied entomology and zoology. 2014. Vol. 49 (2). P. 315–324. DOI: 10.1007/s13355-014-0252-4.

59. Park Y-g, Lee J-H. UV-LED lights enhance the establishment and biological control efficacy of Nesidiocoris tenuis (Reuter) (Hemiptera: Miri dae) // PLoS ONE 2021. Vol. 16 (1). P. e0245165. DOI: 10.1371/journal.pone.0245165.

60. Ambrose D.P., Kumar S.P., Subbu G.R., Claver M.A. Biology and prey influence on the postembryonic development of Rhynocoris lon gifrons (Stål) (Hemiptera: Reduviidae), a poten tial biological control agent // Journal of Biolo- gical control. 2003. Vol. 17 (2). P. 113–119. DOI: 10.18311/jbc/2003/3967.

61. Torres J.B., Boyd D.W. Zoophytophagy in pre- datory Hemiptera // Brazilian archives of biolo gy and technology. 2009. Vol. 52. P. 1199–1208. DOI: 10.1590/S1516-89132009000500018.