

Эффективность бактерий-антагонистов родов Bacillus и Pseudomonas против возбудителя сетчатой пятнистости ячменя в лабораторных условиях
https://doi.org/10.26898/0370-8799-2024-12-6
Аннотация
Сетчатая пятнистость листьев ячменя – это экономически значимая болезнь мирового уровня, приводящая к потере 10–40% урожая. Возбудитель инфекции Pyrenophora teres относится к патогенам с высоким риском развития множественной резистентности сразу к нескольким химическим фунгицидам. В связи с этим разработка методов биологического контроля данного патогена является актуальной задачей. В работе исследовано антагонистическое и защитное действие штаммов Bacillus velezensis BZR 336 g, BZR 517 и Pseudomonas chlororaphis BZR 245 F на двух сортах озимого ячменя с различной устойчивостью к возбудителю сетчатой пятнистости. Установлено, что штаммы снижают рост мицелия P. teres в среднем на 70%, при этом мицелий патогена имеет различные признаки деградации на микроскопическом уровне – деформация, скручивание, «вакуолизация». Применение штаммов на двух сортах ячменя для обработки перед посевом и по вегетации обеспечило подавление проникновения инфекции в ткань растения в среднем на 38,4% и снижение развития уже проникшего в растительную ткань патогена на 23,2%. При обработке только вегетирующих растений эти показатели были ниже на 3–37%. На восприимчивом сорте Романс отмечено более эффективное подавление проникновения инфекции в ткани растений, чем подавление распространения инфекции в уже зараженных растениях. На устойчивом сорте Иосиф была обратная картина. Полученные данные позволяют заключить, что биологические методы борьбы с сетчатой пятнистостью листьев ячменя обладают потенциалом эффективности и снижают развитие P. teres. Применение экологически безопасных методов контроля болезней растений будет способствовать получению экологически безопасной продукции в совокупности со снижением пестицидного пресса на агроценозы. Для более объективной оценки необходимо проведение полевых исследований, позволяющих оценить защитный потенциал штаммов на естественном инфекционном фоне в меняющихся условиях среды.
Ключевые слова
Об авторах
А. М. АсатуроваРоссия
кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник, директор
Н. А. Жевнова
Россия
кандидат биологических наук, старший научный сотрудник
350039, Краснодар, п/о 39
М. Д. Павлова
Россия
младший научный сотрудник
О. Ю. Кремнева
Россия
кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник
Список литературы
1. Мироненко Н.В., Лашина Н.М., Баранова О.А., Зубкович А.А., Афанасенко О.С. Гибридизация между формами Pyrenophora teres в природных популяциях России и Республики Беларусь // Микология и фитопатология. 2021. Т. 55. № 1. С. 51–58. DOI: 10.31857/S0026364821010074.
2. Volkova G., Yakhnik Yа. Pyrenophora teres: population structure, virulence and aggressiveness in Southern Russia // Saudi journal of biological sciences. 2022. Vol. 29. N 10. P. 103401. DOI: 10.1016/j.sjbs.2022.103401.
3. Волкова Г.В., Данилова А.В., Шуляковская Л.Н., Минакова А.В. Фитосанитарное состояние посевов ячменя озимого в Краснодарском крае и Республике Адыгея в предуборочный период // Таврический вестник аграрной науки. 2021. № 1 (25). С. 50–63. DOI: 10.33952/2542-0720-2021-1-25-50-63.
4. Backes A., Guerriero G., Ait Barka E., Jacquard C. Pyrenophora teres: taxonomy, morphology, interaction with barley, and mode of control // Frontiers in plant science. 2021. N 12. Р. 614951. DOI: 10.3389/fpls.2021.614951.
5. Hоyer A.K., Jоrgensen H.J.L., Hodkinson T.R., Jensen B. Fungal endophytes isolated from elymus repens, a wild relative of barley, have potential for biological control of Fusarium culmorum and Pyrenophora teres in barley // Pathogens. 2022. Vol. 11. N 10. P. 1097. DOI: 10.3390/pathogens11101097.
6. Dahanayaka B.A., Vaghefi N., Knight N.L., Martin A., Bakonyi J., Seress D., Prins R., Snyman L. Population structure of Pyrenophora teres f. teres barley pathogens from different continents // Phytopathology. 2021. Vol. 111. N 11. P. 2118–2129. DOI: 10.1094/PHYTO-09-20-0390-R.
7. Clare S.J., Wyatt N.A., Brueggeman R.S., Friesen T.L. Research advances in the Pyrenophora teres – barley interaction // Molecular plant pathology. 2019. N 21 (2). P. 272–288. DOI: 10.1111/mpp.12896.
8. Poudel B., McLean M.S., Platz G.J., Mcilroy J.A., Sutherland M.W., Martin A. Investigating hybridisation between the forms of Pyrenophora teres based on Australian barley field experiments and cultural collections // European journal of plant pathology. 2018. N 2. Р. 465– 473. DOI: 10.1007/s10658-018-1574-9.
9. Dimkic I., Janakiev Т., Petrovic M., Degrassi G., Fira D. Plant-associated Bacillus and Pseudomonas antimicrobial activities in plant disease suppression via biological control mechanisms: a review // Physiological and molecular plant pathology. 2022. N 117. Р. 101754. DOI: 10.1016/j.pmpp.2021.101754.
10. Azizbekyan R.R. Biological preparations for the protection of agricultural plants (review) // Applied biochemistry and microbiology. 2019. Vol. 55. N 8. Р. 816–823. DOI: 10.1134/S0003683819080027.
11. Максимов И.В., Веселова С.В., Шеин М.Ю., Хайруллин Р.М. Эндофиты и защита растений от биотического стресса: перспективы создания биопрепаратов нового поколения // Труды Кубанского государственного аграрного университета. 2022. № 98. С. 98–104.
12. Skiba R.M., Wyatt N.A., Kariyawasam G.K., Fiedler J.D., Yang Sh., Brueggeman R.S., Friesen T.L. Host and pathogen genetics reveal an inverse gene-for-gene association in the P. teres f. maculate – barley pathosystem // Theoretical and applied genetics TAG. 2022. Vol. 135. N 10. P. 3597–3609. DOI: 10.1007/s00122-022-04204-x.
13. Tomic A., Trkulja V., Matic S., Trkulja N., Ilicic R., Scortichini M., Popovic-Milovanovic T. Net blotch (Pyrenophora teres Drechsler): an increasingly significant threat to barley production // Plant protection science. 2024. Vol. 60. N 1. P. 1–30. DOI: 10.17221/122/2023-pps.
14. Perelló A.E., Couretot L., Curti A., Uranga J.P., Consolo V.F. First report of spot lesion of wheat caused by Pyrenophora teres f. sp. maculata observed in Argentina // Crop protection. 2019. Vol. 122. P. 19–22. DOI: 10.1016/j.cropro.2019.03.023.
15. Ronen M., Fridman E., Moreau A., Ben-David R., HarelA., Perl-Treves R., Sela H., Kopahnke D. Characterization of the barley net blotch pathosystem at the center of origin of host and pathogen // Pathogens. 2019. Vol. 8. N 4. P. 275. DOI: 10.3390/pathogens8040275.
16. Асатурова А.М., Жевнова Н.А., Томашевич Н.С. Новые штаммы – продуценты бактериальных фунгицидов для защиты растений и спектр их активности // Защита и карантин растений. 2023. № 10. С. 10–14. DOI: 10.47528/1026-8634_2023_10_10.
Рецензия
Для цитирования:
Асатурова А.М., Жевнова Н.А., Павлова М.Д., Кремнева О.Ю. Эффективность бактерий-антагонистов родов Bacillus и Pseudomonas против возбудителя сетчатой пятнистости ячменя в лабораторных условиях. Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2024;54(12):49-58. https://doi.org/10.26898/0370-8799-2024-12-6
For citation:
Asaturova A.M., Zhevnova N.A., Pavlova M.D., Kremneva O.Yu. Efficacy of antagonist bacteria of the genera Bacillus and Pseudomonas against barley net blotch pathogen in laboratory conditions. Siberian Herald of Agricultural Science. 2024;54(12):49-58. https://doi.org/10.26898/0370-8799-2024-12-6