Особенности морфогенеза сортов ежевики садовой на этапе собственно микроразмножения in vitro

Ежевика является ценной ягодной культурой. В настоящее время с появлением новых сортов возрос интерес к ней не только у садоводов-любителей, но и производственников. Ягоды и по садочный материал этой культуры в основном поступали и поступают в Россию из ближнего и дальнего зарубежья. Массовое размножение качественного посадочного материала ежевики необходимо для закладки насаждений и изучения новых сортов, что требует разработки современных технологий размножения методом культуры тканей in vitro. Целью исследований было изучение морфогенетического потенциала на 10 современных сортах ежевики садовой на этапе собственно микроразмножения. Для этого использовали среду DKW (Driver, Kuniyuki, 1984) в нашей модификации с содержанием различных регуляторов роста – цитокинина 6-бензиламинопурина (БАП) в концентрации 2,5 и 3,0 мкМ и ауксина индолил-3-масляная кислота (ИМК) 0,25 и 0,3 мкМ, и без ауксина. Установлен оптимальный состав регуляторов роста (3 мкМ БАП без добавления ауксина). Проведено ранжирование сортов по основным показателям: коэффициент размножения, доля побегов, пригодных для укоренения, корнеобразование, развитие базального каллуса и витрификации побегов. Сорта ежевики были разбиты на группы с высоким, средним и низким уровнем по основным показателям. Показан разнонаправленный характер ответных реакций изученных сортов ежевики на условия культивирования. Установлено статистически значимое влияние сорта по всем изученным показателям морфогенеза. По наибольшему коэффициенту размножения выделилась группа сортов Chester, Black Satin, Brzezina и Von (12,5–9,5 шт./эксплант). По выходу побегов, пригодных для укоренения, отмечены наилучшие сорта Heaven Can Wait, Black Diamond, Black Satin, Bestberry (69,2–49,3%). В характере и направленности морфогенеза ключевую роль играет сорт, а среда лишь позволяет раскрыть его потенциал.

1. Кузичева Н.Ю. Стратегические проблемы развития садоводства России // Вестник Мичуринского государственного аграрного университета. 2023. Т. 72. № 1. С. 142–146.

2. Regni L., Cesarini A., Micheli M., Proietti P. A bibliometric analysis of research on black berry micropropagation // Plant Cell Tiss Or gan Cult. 2025. Vol. 160. N 2. Art. 33. DOI: 10.1007/s11240-025-02978-8.

3. Макаров С.С., Упадышев М.Т., Хамитов Р.С., Антонов А.М., Куликова Е.И., Кузнецова И.Б. Перспективы промышленного выращивания и методы размножения лесных ягодных растений: монография. М.: ООО «ИКЦ "Ко лос-с"», 2023. 152 с.

4. Грюнер Л.А., Корнилов Б.Б. Приоритетные направления и перспективы селекции еже вики в условиях средней полосы России // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2020. Т. 24. № 5. С. 489–500. DOI: 10.18699/VJ20.641.

5. Гамбург К.З. Основы клонального микро размножения растений. Новосибирск: Сибирское отделение РАН, 2022. 180 с. DOI: 10.53954/9785604782361.

6. Плаксина Т.В., Гусев Д.А. Использование среды Драйвера и Куниюки (Driver & Kuni yuki Walnut medium) для микроразмножения сортов малины красной // Достижения науки и техники АПК. 2021. Т. 35. № 9. С. 19–24. DOI: 10.53859/02352451_2021_35_9_19.

7. Плаксина Т.В., Гусев Д.А. Совершенствование элементов технологии клонального микроразмножения малины разного типа плодоношения // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2024. T. 54. № 4. С. 5–12. DOI: 10.26898/0370-8799-2024-4-1.

8. Мелихов И.Д., Муратова С.А. Микроразмножение растений рода Rubus на питательных средах разного минерального состава // Вест ник Мичуринского государственного аграрного университета. 2024. Т. 76. № 1. С. 77–82.

9. Clapa D., Harta M., Cordea M.I. Propagation of blackberry cultivars in three in vitro culture systems and evaluation of genetic uniformity // Journal of Central European Agriculture. 2024. Vol. 25. N 4. P. 1076–1087.

10. Clapa D., Harta M., Szabo K., Teleky B., Pam f il D. The use of wheat starch as gelling agent for in vitro proliferation of blackberry (Rubus fruti cosus L.) cultivars and the evaluation of genetic f idelity after repeated subcultures // Horticultu rae. 2023. Vol. 9. N 8. Art. 902. DOI: 10.3390/horticulturae9080902.

11. Aly A.A., El-Desouky W., El-Leel O.F.A. Micro propagation, phytochemical content and antioxidant activity of gamma-irradiated blackberry (Rubus fruticosus L.) plantlets // In Vitro Cell. Dev.Biol.-Plant. 2022. Vol. 58. P. 457–469. DOI: 10.1007/s11627-021-10244-7.

12. Матушкина О.В., Пронина И.Н., Матушкин С.А., Кружкова Л.В. Модифицированные элементы технологии размножения садовых культур in vitro // Плодоводство и ягодоводство России. 2020. Т. 61. С. 44–53. DOI: 10.31676/2073-4948-2020-61-44-53.

13. Тезекбаева Б., Хасейн А., Хансеитова А., Есенбаева Г., Георгиева М., Малахова Н. Оптимизация условий введения в культуру in vitro и микроклонального размножения растений ежевики (Rubus L.) // Ізденістер, Нəтижелер. 2024. Т. 103. №. 3. С. 278–288. DOI: 10.37884/3-2024/31.

14. Карпушина М.В., Амосова М.А. Микроразмножение ежевики (Rubus) сорта Карака блэк in vitro // Научные труды Северо-Кавказского федерального научного центра садоводства, виноградарства, виноделия. 2022. Т. 35. С. 13–17. DOI: 10.30679/2587-9847-2022-3513-17.

15. Da Silva I.A.O., Biasi L.A. Double-phase cul ture medium and plant growth regulators in the micropropagation of blackberries // Comunicata Scientiae. 2022. N 13. P. 1–7.

16. Lapiz-Culqui Y.K., Meléndez-Mori J.B., Teja da-Alvarado J.J., Cortez D., Huaman E., Núñez Zarantes V.M., Oliva М. Study of the physico chemical characteristics, antimicrobial activity, and in vitro multiplication of wild blackberry species from the Peruvian highlands // Scientific Reports. 2024. N 14. Art. 3863. DOI: 10.1038/s41598-024-54058-0.