Содержание салидрозида в культивируемых клоновых растениях Rhodiola rosea L.

Салидрозид ‒ гликозид тирозола, который преимущественно содержится в подземных частях растений рода Rhodiola L., включая родиолу розовую (Rhodiola rosea L.). Этот биологически активный компонент известен разнообразными полезными свойствами: противораковым, антиоксидантным, антивозрастным, противодиабетическим, антидепрессивным, антигиперлипидемическим, противовоспалительным и иммуномодулирующим эффектом. Проанализировано содержание салидрозида в корневищах и корнях R. rosea горноалтайского происхождения, выращиваемых в интродукции в лесостепной зоне Западной Сибири. Посадочный материал для эксперимента получен методом in vitro. Для биохимического анализа использованы клоновые растения возрастом от 2 до 6 лет, а также одно растение, выращенное в интродукции в течение 20 лет. Максимальное содержание салидрозида в корневище и корнях (2,33 и 1,04 мг/г соответ ственно), а также наибольший ежегодный прирост биомассы подземных органов (более чем в 3 раза) отмечены у клоновых образцов на 6-й год культивирования. С 2-го по 5-й год содержание салидрозида варьировало от 1,04 до 1,83 мг/г и не зависело от возраста растений. Растение, выращенное в интродукции в течение 20 лет, показало самое высокое содержание салидрозида в корневище ‒ 12,25 мг/г, что соответствует показателям природных образцов из Горного Алтая или превышает их. Следует отметить, что лишь 20-летнее растение соответствует требованиям фармакопеи Российской Федерации по уровню накопления салидрозида. Сделан вывод, что 6-летний цикл культивирования при интродукции в лесостепной зоне Западной Сибири недостаточен для получения стандартного сырья R. rosea. В дальнейшем запланировано разработать агротехнические методы, которые позволят повысить содержание салидрозида и одновременно сократить время культивирования растений.

1. Tinsley G.M., Jagim A.R., Potter G.D.M., Garner D., Galpin A.J. Rhodiola rosea as an adaptogen toenhance exercise performance: a review of the literature // British Journal of Nutrition. 2024. Vol. 131 (3). P. 461‒473. DOI: 10.1017/S0007114523001988.

2. Zhang X., Xie L., Long J., Xie Q., Zheng Y., Liu K., Li X. Salidroside: A review of its recent advances in synthetic pathways and pharmacological properties // Chemico-Biological Interactions. 2021. Vol. 339. P. 109268. DOI: 10.1016/j.cbi.2020.109268.

3. Jin M., Wang C., Xu Y., Zhang Z., Wu X., Ye R., Han D. Pharmacological effects of salidroside on central nervous system diseases // Biomedicine & Pharmacotherapy. 2022. Vol. 156. P. 113746. DOI: 10.1016/j.biopha.2022.113746.

4. Liu Y., Wang J., Wang L., Zhang C., Bai Q., Liu X., Yang R. Biosynthesis and biotechnolo- gical production of salidroside from Rhodiola genus plants // Phytochemistry Reviews. 2022. Vol. 21. P. 1605–1626. DOI: 10.1007/s11101-021-09800-1.

5. Calabrese E.J., Dhawan G., Kapoor R., Aga- thokleous E., Calabrese V. Rhodiola rosea and salidroside commonly induce hormesis, with particular focus on longevity and neuroprotection // Chemico-biological interactions. 2023. Vol. 380. P. 110540. DOI: 10.1016/j.cbi.2023.110540.

6. Liang K., Ma S., Luo K., Wang R., Xiao C., Zhang X., Li M. Salidroside: an overview of its promising potential and diverse applications // Pharmaceuticals. 2024. Vol. 17 (12). P. 1703. DOI: 10.3390/ph17121703.

7. Liu Q., Chen J., Zeng A., Song L. Pharmacolo- gical functions of salidroside in renal diseases: facts and perspectives // Frontiers in Pharmacology. 2024. Vol. 14. P. 1309598. DOI: 10.3389/fphar.2023.1309598.

8. Schwarz N.A., Stratton M.T., Colquhoun R.J., Manganti A.M., Sherbourne M., Mourey F., Weng J.K. Salidroside and exercise performance in healthy active young adults–an exploratory, randomized, double-blind, placebo-controlled study // Journal of the International Society of Sports Nutrition. 2024. Vol. 21 (1). P. 2433744. DOI: 15502783.2024.2433744.

9. Nikolaichu H., Studziński M., Stankevič M., Choma I.M. Qualitative and Quantitative eva- luation of rosavin, salidroside, and p-tyrosol in artic root products via TLC-screening, HPLCDAD, and NMR spectroscopy // Molecules. 2022. Vol. 27 (23). P. 8299. DOI: 10.3390/molecules27238299.

10. Erst A.A., Petruk A.A., Zibareva L.N., Erst A.S. Morphological, histochemical and biochemical features of cultivated Rhodiola rosea (Altai Mountains ecotype) // Contemporary Problems of Ecology. 2021. Vol. 14 (6). P. 701‒710. DOI: 10.1134/S1995425521060135.

11. Bozhilova M. Salidroside content in wild growing Rhodiola rosea (Crassulaceae) from Bulgaria // Forest Science (0861-007X). 2024. Vol. 60 (3).

12. Kotsupiy O.V., Achimova A.А., Zhmud E.V., Williams N., Kuban I.N., Dorogina O.V., Khramova E.P. Secondary metabolites in rhizomes of wild Rhodiola rosea representatives from va- rious ecological and geographical conditions in the Altai Mountains // Biochemical Systematics and Ecology. 2024. Vol. 116. P. 104860. DOI: 10.1016/j.bse.2024.104860.

13. Erst A.A., Kotsupiy O.V., Erst A.S., Kuznetsov A.A. Individual differences in growth and in accumulation of secondary metabolites in Rhodiola rosea cultivated in Western Siberia // International Journal of Molecular Sciences. 2023. Vol. 24 (14). P. 11244. DOI: 10.3390/ijms241411244.

14. Зибарева Л.Н., Прокопьев А.С., Рабцевич Е.С. Фенольные соединения и элементный состав растений Rhodiola rosea (Crassulaceae), произрастающих на территории Горного Алтая // Растительные ресурсы. 2024. Т. 60. № 2. C. 89‒103. DOI: 10.31857/S0033994624020063.

15. Ajdert P., Jan L., Burman R. Liquid chromatographic method for the quantification of salidroside and cinnamyl alcohol glycosides for quality control of golden root (Rhodiola rosea L.) // Journal of Applied Research on Medicinal and Aromatic Plants. 2022. Vol. 26. P. 100364. DOI: 10.1016/j.jarmap.2021.100364.