Роль кровососущих насекомых и иксодовых клещей в возможной передаче вируса лейкоза крупного рогатого скота

Наблюдаемое в настоящее время широкое распространение лейкоза крупного рогатого скота, особенно в регионах с развитым молочным животноводством, остается одной из актуальнейших проблем ветеринарной науки. Сельскохозяйственные предприятия, не только крупные компании, но и небольшие фермерские хозяйства, несут огромные экономические потери, связанные с вирусом лейкоза крупного рогатого скота. Развитие лейкоза в стаде может привести к снижению общего здоровья и продуктивности всего поголовья, что сказывается на рентабельности хозяйства в долгосрочной перспективе. Лейкоз приводит к снижению продуктивности, ухудшению здоровья и сокращению периода использования высокопродуктивных коров. Лейкоз как вторичный иммунодефицит выступает причиной сокращения плодовитости у коров, роста числа абортов, снижению процента выживаемости телят, развития различных сопутствующих заболеваний. Особый интерес в распространении инфекции представляют пути передачи вируса. Неплохо изучены три из них: вертикальный, горизонтальный и ятрогенный. Трансмиссивный путь передачи инфекции в настоящее время остается под вопросом. В последнее десятилетие активно изучаются кровососущие насекомые и клещи как потенциальные переносчики возбудителей вирусных болезней у сельскохозяйственных животных, в том числе лейкоза крупного рогатого скота. Возможно, насекомые выступают как фактор, способствующий распространению вируса, особенно в периоды массовых вспышек и при наличии большого числа инфицированных животных. В статье представлен обширный систематический анализ литературных данных из авторитетных научных изданий об участии слепней из семейства Tabanidae, зоофильных мух Stomoxys сalcitrans, а также клещей из семейства Ixodidae в трансмиссивной передаче возбудителей болезней у сельскохозяйственных животных, в частности возбудителя лейкоза крупного рогатого скота.

1. Донник И.М., Петропавловский М.В. Лейкоз крупного рогатого скота: современный подход // Животноводство России. 2022. № 2. С. 57–59.

2. Донник И.М., Петропавловский М.В., Гулюкин М.И., Кривонос Р.А., Черных О.Ю., Палагин С.Ю. Эффективность противоэпизоотических мероприятий на административных территориях Российской Федерации с разной эпизоотической обстановкой // Ветеринария и кормление. 2025. № 1. С. 1–6.

3. Гулюкин М.И., Барабанов И.И., Иванова Л.А., Степанова Т.В. Мониторинг эпизоотической ситуации по лейкозу крупного рогатого скота в товарных и племенных хозяйствах Российской Федерации за 2014–2015 гг. // Ветеринария и кормление. 2016. № 4. С. 5–39.

4. Генджиев А.Я., Гулюкин М.И., Абакин С.С., Убушиева А.В. Диагностика эпизоотий и факторы риска лейкоза у крупного рогатого скота в период с 2000 по 2024 г. // Ветеринария и кормление. 2025. № 3. С. 35–39.

5. Polat M., Takeshima S., Aida Y. Epidemiology and genetic diversity of bovine leukemia virus // Virology journal. 2017. N 14. P. 209–224.

6. Баскаран Д., Спирин П.В., Прасолов В.С. Активированные лейкозные онкогены, определяющие злокачественное перерождение кроветворных клеток // Молекулярная биология. 2010. № 3. С. 418–430.

7. Buehring G.C., De Laney А., Shen Н.М., Chu D.L., Razavian N., Schwartz D.A., Demkovich Z.R., Bates M.N. Bovine leukemia virus discovered in human blood // BMC Infectious Diseases. 2019. N 19. Р. 297.

8. Гулюкин М.И., Козырева Н.Г., Иванова Л.А., Степанова Т.В., Клименко А.И., Коваленко А.В., Дробин Ю.Д., Василенко В.Н. Межвидовая передача вируса лейкоза крупного рогатого скота в эксперименте // Вопросы вирусологии. 2015. № 60 (5). С. 32–37.

9. Lee L.C., Scarrett W.K., Buehring G.C., Saunders G.K. Bovine leukemia virus infection in a juvenile alpaca with multicentric lymphoma // Canadian veterinary journal. 2012. Vol. 53. P. 283–286.

10. Глазунов Ю.В., Кабицкая Я.А., Донник И.М., Бойко Е.Г., Глазунова Л.А. Изучение возможности резервации вируса лейкоза крупного рогатого скота в имаго Dermacentor reticulates // Вестник Бурятской государственной сельскохозяйственной академии им. В.Р. Филиппова. 2020. № 4 (61). С. 40–47.

11. Крутько К.С., Кинарейкина А.Г., Серкова М.И., Селиванова Е.А., Федорова О.А. Выявление в кровососущих двукрылых насекомых Тюменской области генетического материала возбудителей вирусных болезней животных // Российский паразитологический журнал. 2022. Т. 16. № 4. С. 389–402.

12. Василевич Ф.И. Эколого-биологические особенности кровососущих насекомых Центральной Нечерноземной зоны России // Ветеринария. 2020. № 2. С. 32–38.

13. Сивкова Е.И. Вредоносное воздействие слепней (Diptera, Tabanidae) на организм животного и человека (обзор) // Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. 2019. № 20. С. 575–579.

14. Домацкий В.Н., Глазунова Л.А. Природные очаги туляремии на территории Российской Федерации // Вестник Башкирского государственного аграрного университета. 2023. № 4. С. 88–96.

15. Сивкова Е.И., Хлызова Т.А., Федорова О.А. Некоторые аспекты изучения слепней (Diptera, Tabanidae) Азиатской части России // Мир инноваций. 2017. № 3-4. С. 137–140.

16. Saegerman C., Speybroeck N., Vanbinst T., Berkvens D. Bovine leukaemia virus transmission by the stable fly (Stomoxys calcitrans): quantifying the herd-level impact under Belgian field conditions // Preventive veterinary medicine. 2021. Vol. 193. P. 105442.

17. Olesen K.A., Hish G.B., Pedersen H.G. Mechanical transmission of bovine leukaemia virus by the stable fly, Stomoxys calcitrans: a Danish field-to-pen study // Veterinary microbiology. 2022. Vol. 270. P. 109412. DOI: 10.1016/j.vetmic.2022.109412.

18. Власов М.Е., Середа А.Д., Балышев В.М. Cохраняемость вируса африканской чумы свиней в осенних жигалках и падальных мухах // Ветеринария. 2019. № 8. С. 22–25.

19. Левченко М.А., Силиванова Е.А. Stomoxys calcitrans (Diptera: Muscidae): средства и методы борьбы. Обзор // Российский паразитологический журнал. 2020. Т. 14. № 2. С. 103–113.

20. Lempereur L., Sohier C., Smeets F., Maréchal F., Berkvens D., Madder M., Francis F., Losson B. Haematopota spp. and Stomoxys calcitrans using a mark-releaserecapture approach in Belgium // Medical and veterinary entomology. 2018. Vol. 32 (3). P. 298–303.

21. Friesen K.M., Johnson G.D. Stable Fly Phenology in a Mixed Agricultural-Wildlife Ecosystem in Northeast Montana // Environmental entomology. 2013. Vol. 42 (1). P. 49–57.

22. Baldacchino F., Muenworn V., Desquesnes M., Desoli F., Charoenviriyaphap T., Duvallet G. Transmission of pathogens by Stomoxys flies (Diptera, Muscidae): a review // Parasite. 2013. N 20. Р. 26.

23. Ooshiro M., Hayashida K., Kono Y., Murakami K. Mechanical transmission of bovine leukaemia virus by the stable fly: a laboratory feeding trial // Journal of veterinary medical science. 2018. Vol. 80 (3). P. 485–488. DOI: 10.1292/jvms.17-0479.

24. Якименко В.В., Малькова М.Г., Шпынов С.Н. Иксодовые клещи Западной Сибири: фауна, экология, основные методы исследования: монография. Омск, 2013. 240 с.

25. Балашов Ю.С. Паразитизм клещей и насекомых на наземных позвоночных: монография. СПб.: Наука, 2009. 357 с.

26. Чичерина Г.С., Бахвалова В.Н., Потапова О.Ф., Панов В.В., Малькова М.Г., Морозова О.В. Динамика феногенетических свойств вируса клещевого энцефалита при моделировании трансмиссии от иксодовых клещей диким грызунам // Национальные приоритеты России. 2014. № 3 (13). С. 121–126.

27. Цапко Н.В. Список видов иксодовых клещей (Acari: Ixodidae) России // Паразитология. 2020. Т. 54. № 4. С. 341–352.

28. Коренберг Э.И. Изучение микробиома иксодовых клещей и возбудителей трансмиссивных инфекций в их соотношении // Национальные приоритеты России. 2021. № 3 (42). С. 182–186.

29. Pascucci I., Di Domenico M., Camma C., Savini G., Di Provvido A., Morrone F., Di Sabatino D., Monaco F., Lorusso A. First detection of bovine leukaemia virus DNA in field-collected Rhipicephalus bursa and R. sanguineus ticks: evidence for trans-stadial passage // Ticks and Tick-borne Diseases. 2023. Vol. 14 (5). P. 102152. DOI: 10.1016/j.ttbdis.2023.102152.

30. Wang Y., Kono Y., Kubota T., Inokuma H., Kamio T. Mechanical transmission of bovine leukaemia virus by contaminated mouthparts of Haemaphysalis longicornis: a laboratory proof-of-concept // Veterinary microbiology. 2022. N 270. P. 109414. DOI: 10.1016/j.vetmic.2022.109414.

31. Machado T.R., Rodrigues-da-Silva F.O., Oliveira G.H.N., Ribeiro C.F., Bastos G.Q., Aguirre A.A., Herrera H.V. Survival of BLV-infected bovine lymphocytes in tick haemolymph and maintenance of infectivity // Veterinary microbiology. 2020. N 247. P. 108764.

32. Sato A.M., Aguirre A.A., Herrera H.V., Machado T.R., Ribeiro C.F., Rodrigues-da-Silva F.O., Romero M.H. Western-blot detection of BLV gp51 antigen in the midgut of Haemaphysalis longicornis ticks after artificial feeding // Journal of virological methods. 2024. N 319. P. 114370.

33. Глазунов Ю.В., Домацкий В.Н., Глазунова Л.А. Видовой состав и численность иксодовых клещей, нападающих на крупный рогатый скот, инфицированный вирусом лейкоза в Тюменской области // АПК: инновационные технологии. 2023. № 4 (63). С. 26–32.