Фенотипическое определение чувствительности к антибактериальным препаратам полевых изолятов вида Mycobacterium avium, выделенных из биоматериала крупного рогатого скота

В исследовании проанализирована фенотипическая чувствительность к антибактериальным препаратам различных групп у 27 культур полевых изолятов Mycobacterium avium, выделенных из биоматериала (лимфатические узлы и внутренние органы) крупного рогатого скота из благополучных по туберкулезу хозяйств Новосибирской области. Выделение культур проводили методом А.П. Аликаевой с посевом на яичные среды Левенштейна – Йенсена и Финн-II. Первичную дифференциацию осуществляли на основе культуральных, морфологических и биохимических свойств в соответствии с «Определителем бактерий Берджи». Для подтверждения видовой принадлежности использовали методы времяпролетной масс-спектрометрии Microflex MALDI-TOF и гибридизации на микрочипах. Фенотипическую чувствительность к антибактериальным препаратам как первичный качественный тест оценивали диско-диффузионным методом на среде Левенштейна – Йенсена. Особенности строения клеточной стенки нетуберкулезных микобактерий и сложности процесса проникновения препаратов в плотную питательную среду объясняют использование диско-диффузионного метода именно как стартового качественного теста для первичной оценки антимикробного действия лекарственных средств в отношении M. avium. Согласно полученным результатам, достаточную чувствительность изоляты показали к рифампицину (51,8%), моксифлоксацину (44,4%), амикацину и линезолиду (по 37,0%). Доля резистентных культур превышала 50,0% для большинства препаратов: офлоксацин – 88,9%, стрептомицин – 85,2%, имипенем – 81,5%, канамицин – 74,1%. Выявлены сложные профили резистентности: шесть культур (22,2%) оказались устойчивы к восьми препаратам, по пять культур (18,5%) – к девяти и десяти препаратам. Полученные данные совпадают с литературными сведениями о природной устойчивости к антибактериальным средствам у изолятов микобактерий комплекса M. avium, а также о распространении лекарственно-устойчивых форм нетуберкулезных микобактерий. Результаты проведенного исследования позволят повысить эффективность контроля возможных эпизоотических рисков.

1. Kaczmarkowska A., Didkowska A., Kwiecień E., Stefańska I., Rzewuska M., Anusz K. The Mycobacterium avium complex – an underestimated threat to humans and animals. Annals of Agricultural and Environmental Medicine. 2022; 29 (1): 22–27. https://doi.org/10.26444/aaem/136398

2. Huang W.-Ch., Yu M.-Ch., Huang Y.-W. Identification and drug susceptibility testing for nontuberculous mycobacteria. Journal of the Formosan Medical Association. 2020; 119 (1): S32–S41. https://doi.org/10.1016/j.jfma.2020.05.002

3. Reil I., Špičić S., Barbić L. et al. Antimicrobial resistance in rapidly growing nontuberculous mycobacteria among domestic and wild animals emphasizing the zoonotic potential. Microorganisms. 2023; 11 (10): 2520. https://doi.org/10.3390/microorganisms11102520

4. Lipman M., Cleverley J., Fardon T. et al. Current and future management of non-tuberculous mycobacterial pulmonary disease (NTM-PD) in the UK. BMJ Open Respiratory Research. 2020; 7 (1): e000591. https://doi.org/10.1136/bmjresp-2020-000591

5. Pulingam T., Parumasivam T., Gazzali A.M. et al. Antimicrobial resistance: Prevalence, economic burden, mechanisms of resistance and strategies to overcome. European Journal of Pharmaceutical Sciences. 2022; 170: 106103. https://doi.org/10.1016/j.ejps.2021.106103

6. Naidoo K., Dookie N. Can the GeneXpert MTB/XDR deliver on the promise of expanded, near-patient tuberculosis drug-susceptibility testing. The Lancet Infectious Diseases. 2022; 22 (4): e121–e127. https://doi.org/10.1016/S1473-3099(21)00613-7

7. Носова Е.Ю., Макарова М.В., Михайлова Ю.Д., Свириденко М.А., Хахалина А.А., Сафонова С.Г. Новые подходы к диагностике туберкулеза и определению лекарственной чувствительности микобактерий туберкулеза к антибактериальным препаратам. Туберкулез и социально-значимые заболевания. 2021; 9 (3): 37–44. https://doi.org/10.54921/2413-0346-2021-12-3-37-44

8. Ndanga M.E.D., Abdul J.B.P.A.A., Edoa J.R. et al. Species identification and drug susceptibility testing of non-tuberculous mycobacteria by Line Probe Assay in Lambaréné, Gabon-a cross-sectional study. BMC Infectious Diseases. 2023; 23 (1): 651. https://doi.org/10.1186/s12879-023-08617-x

9. Maitra A., Solanki P., Sadouki Z., McHugh T.D., Kloprogge F. Improving the drug development pipeline for mycobacteria: modelling antibiotic exposure in the hollow fibre infection model. Antibiotics. 2021; 10 (12): 1515. https://doi.org/10.3390/antibiotics10121515

10. Умпелева Т.В., Шульгина М.В., Вахрушева Д.В., Еремеева Н.И. Чувствительность к антибактериальным препаратам нетуберкулезных микобактерий комплекса Mycobacterium avium, выделенных у пациентов Уральского федерального округа. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2022; 24 (2): 147–154. https://doi.org/10.36488/cmac.2022.2.147-154

11. Ионина С.В., Донченко А.С., Гусельникова Е.П., Гордеева Е.И. Микробиологическое и генетическое типирование атипичных микобактерий, выявленных на территории Новосибирской области. Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2024; 54 (8): 75–82. https://doi.org/10.26898/0370-8799-2024-8-8

12. Ионина С.В. Микробиологические особенности и антибиотикочувствительность культур Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (MAP), выделенных на территории Западной Сибири. Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2023; 53 (12): 97–103. https://doi.org/10.26898/0370-8799-2023-12-11