Оценка коллекционных образцов сахарной свеклы (Beta vulgaris L.) на холодостойкость

Представлены результаты исследования гибридов и линий сахарной свеклы, устойчивых к неблагоприятным факторам возделывания культуры. Изучено 50 образцов отечественной и зарубежной селекции из разных стран мира: России, Украины, Киргизии, Германии, Австрии. Эксперимент проводили в лабораторных условиях с использованием методов проращивания при низких температурах и восстановления регенерационных процессов в культуре in vitro. Оценку устойчивости генотипов сахарной свеклы к холодовому стрессу проводили по методике с использованием физиологического метода проращивания семян при температуре 4 °С в климатической камере в течение 45–48 сут. Выделены образцы, показавшие высокую всхожесть: ЧС 97 (50%), Киргизская 069 (42), ЧС 1631 (38), Бийская 32 (38), РМС 133 (33), Успех (31), Рамонская 125 (30%). Данные формы рекомендованы для возделывания в северных регионах Республики Казахстан. Оценка холодостойкости с использованием культуры in vitro проведена согласно методике, разработанной Институтом биоэнергетических культур и сахарной свеклы (г. Киев, Украина). В качестве эксплантов использованы гипокотили с верхушечной почкой (черешки) 15-дневных проростков гибридов сахарной свеклы. На основании оценки коллекционных образцов сахарной свеклы с использованием культуры in vitro отобраны следующие генотипы: Киргизская 069, ЧС 97, РМС 60, ЧС 1611, 2249. Линии ЧС 97 и ЧС 1611, способные восстанавливать регенерационные процессы после длительного холодового стресса при температуре 4 °С, микроклонально размножены с целью включения в селекционный процесс для получения холодостойких гибридов.

1. Stevanato P., Chiodi C., Broccanello C., Concheri G., Biancardi E., Pavli O., Skaracis G. Sustainability of the Sugar Beet Crop // Sugar Tech. 2019. Vol. 21. P. 703–716. DOI: 10.1007/s12355-019-00734-9.

2. Biancardi E., Mitchell M.J., Panella L., Lewellen R., Stevanato P. Chapter 6 Sugar Beet. Bradshaw J.E. (ed.) // Root and Tuber Crops, Handbook of Plant Breeding. 2010. P. 173–219. DOI: 10.1007/978-0-387-92765-7_6.

3. Pfeiffer N., Trankner C., Lemnian I., Grosse I., Muller A., Jung C., Kopisch-Obuch F. Genetic analysis of bolting after winter in sugar beet (Beta vulgaris L.) // Theoretical and Applied Genetics. 2014. Vol. 127. Is. 11. P. 2479–2489. DOI: 10.1007/s00122-014-2392-x.

4. Волгин В.В., Логвинов В.А., Павленко Е.А., Шевченко А.Г. Выведение холодостойких гибридов // Сахарная свекла. 1994. № 6. С. 9–10.

5. Роик Н.В., Бех Н.С., Коцар М.А., Бойко И.И. Оценка и отбор холодостойких форм сахарной свеклы с использованием культуры in vitro // Сахарная свекла. 2016. № 9. С. 11–13.

6. Патуринский А.В., Козулина Н.С. Физиологическая оценка засухоустойчивости и потенциальной продуктивности селекционного материала зерновых культур // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2003. № 4. С. 151–156.

7. Baloch M.J., Dunwell J., Khakwani A.A., Dennet M., Jatoi W.A., Channa S.A. Assessment of wheat cultivars for drought tolerance via osmotic stress imposed at early seedling growth stages // Journal of Agricultural Research. 2012. Vol. 50. P. 299–310.

8. Юдина Р.С., Леонова И.Н., Салина Е.А., Хлесткина Е.К. Влияние чужеродных интрогрессий в геноме пшеницы на ее устойчивость к осмотическому стрессу // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2014. Т. 18. № 4/1. С. 643–649.

9. Murashige T., Skoog F. A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays with Tobacco Tissue Cultures // Physiologia Plantarum. 1962. Vol. 15. P. 473-497. DOI: 10.1111/j.13993054.1962.tb08052.x.

10. Yerzhebayeva R.S., Abekova A.M., Bersimbaeva G.H., Konysbekov K.T., Bastaubaeva Sh.O., Roik N.V., Urazaliev K.R. In vitro Cell Selection of Sugar Beet for Resistance to Culture Filtrate of the Fungus Fusarium oxysporum // Cytology and Genetics. 2019. Vol. 53 (4). P. 307–314. DOI: 10.3103/S0095452719040042.