Способы повышения иммуногенности инактивированных вакцин против мыта лошадей

Представлены результаты исследований по специфической профилактике инфекционных болезней лошадей. Разработаны способы повышения иммуногенности экологически безопасных вакцин против мыта, который вызывается мытным стрептококком – Sreptococcus equi. Работа проведена в лабораторных условиях и коневодческих хозяйствах Республики Саха (Якутия). Токсичность и иммуногенность вакцины определяли общепринятыми методами на молодняке лошадей. На основании изучения иммунобиологической реактивности молодняка лошадей обосновано использование иммуномодуляторов при разработке инактивированных вакцинных препаратов. Вакцины с иммуномодуляторами испытывали и регистрировали согласно утвержденным методикам исследования лекарственных средств для ветеринарного применения. В качестве иммуномодулятора в составе вакцин использованы полирибонат (поливедрим) и культуральная жидкость (фугат) из штамма бактерий Bacillus subtilis ТНП-3. Для приготовления вакцины против мыта использовали штаммы бактерий Streptococcus equi Н-34 и Streptococcus equi «Н-5/1», которые депонированы во Всероссийской государственной коллекции штаммов микроорганизмов Всероссийского государственного Центра качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов, используемых в ветеринарии и животноводстве. После иммунизации инактивированными вакцинами с иммуномодуляторами эффективность вакцин повышается на 20% и достигает 90%. Вакцины повышают иммунобиологическую реактивность организма. Наиболее эффективными отмечены вакцина «Табын» и вакцина из штамма Streptococcus equi «Н-5/1» с фугатом, штамма бактерий Bacillus subtilis ТНП-3. Вакцина с полирибонатом утверждена в России (2000 г.), вакцина «Табын» применяется в Казахстане (2018 г.). Данные вакцинные препараты, обеспечивающие высокую противоэпизоотическую эффективность, экологически безвредны, так как не содержат токсичные вещества и антибиотики.

1. Timoney J.F. The pathogenic equine streptococci // Veterinary Research. 2004. N 35 (4). P. 397–409. DOI: 10.1051/vetres:2004025.

2. Sweeney C.R., Timoney J.F., Newton J.R., Hines M.T. Streptococcus equi infections in horses: guidelines for treatment, control and prevention of strangles // Journal of Veterinary Internal Medicine. 2005. N 19. P. 123–134. DOI: 10.1111/j.1939-1676.2005.tb02671.x.

3. Harris S.R., Robinson C., Steward K.F., Webb K.S., Paillot R., Parkhill J., Holden M.T.G., Waller A.S. Genome specialization and decay of the strangles pathogen, Streptococcus equi, is driven by persistent infection // Genome Research. 2015. N 25(9). P. 1360–1371. DOI: 10.1101/gr.189803.115.

4. Густокашин К.А. Модель распространения мыта лошадей в Алтайском крае с 1964 по 2011 годы, основанная на эпизоотологическом мониторинге // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2013. № 11 (109). С. 79–80.

5. Неустроев М.П. Мыт лошадей в Якутии (этиология, эпизоотология, меры борьбы и профилактика): монография. Новосибирск, 2000. 144 с.

6. Баянжаргал Б., Бадмаева О.Б., Цыдыпов В.Ц. Эпизоотологические аспекты инфекционных болезней лошадей в Монголии // Вестник Красноярского государственного аграрного университета. 2014. № 3. С. 156–159.

7. Раимбеков Д.Р., Джетигенов Э.А., Карыпов К.А. Эпизоотические особенности мыта лошадей в Чуйской области // Вестник Кыргызского национального аграрного университета им. К.И. Скрябина. 2016. № 2 (38). С. 48–52.

8. Nearmat-Allah A.N.F., Damaty H. M. Strangles in Arabian horses in Egypt: clinical, epidemiological, hematological, and biochemical aspects // Veterinary World. 2016. N 9(4). P. 820– 826. DOI: 10.14202/vetworld.2016.820-826.

9. Kim J.W., Jung J.Y., Lee H., Kim H.Y., Yoon S.S., So B.J., Choi E. A case of streptococcus equi zooepidemicus infection in a thoroughbred horse. // Journal of Comparative Pa thology. 2018. N 158. P. 137 DOI: 10.1016/j.jcpa.2017.10.133.

10. Libardoni F., Machado G., Gressler L.T., Kowalski A.P., Diehl G.H., Santos L.C., Corbellini L.G., Vargas A.C. Prevalence of Streptococcus equi subsp. in horse and associated risk factors in the State of Rio Grande do Sul, Brazil // Research in Veterinary Science. 2016. N 104. P. 53–57. DOI: org/101016/j.rvsc.2015.11.009.

11. Boyle A.G., Timoney J.R., Newton J.R. Streptococcus equi Infections in Horses: Guidelines for Treatment, Control, and Prevention of Strangles-Revised Consensus Statement // Journal of Veterinary Internal Medicine. 2018. N 32(2). P. 633–647.

12. Донченко А.С., Донченко В.Н. Повышение протективных свойств вакцины ВЦЖ // Вестник российской академии сельскохозяйственных наук. 1995. № 5. С. 58–61.

13. Осмаев И.А., Юров К.П., Неустроев М.П. Иммуномодулирующие свойства эндогенного интерферона у телят // Ветеринария. 2007. № 1. С. 11–12.

14. Неустроев М.П., Тарабукина Н.П., Петрова С.Г. Способ повышения эффективности вакцинации против инфекционных абортов в табунном коневодстве // Российская сельскохозяйственная наука. 2019. № 1, С. 55– 57. DOI:10.31857/152500-26272019155-57.

15. Неустроев М.П., Мурашев А.Н., Бондаренко Д.А., Степанова А.М., Тарабукина Н.П. Исследование токсичности препарата Сахабактисубтил на крысах // Журнал микробиологии, эпидемиологии и эммунобиологии. 2017. № 5. С. 59–64.

16. Неустроев М.П., Мурашев А.Н., Бондаренко Д.А., Степанова А.М., Тарабукина Н.П. Определение максимальной толерантной дозы препарата Сахабактисубтил на мышах линии СД-1 // Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. 2020. № 2 (34). С. 240–244. DOI: 10.36871/vet.san.hyg.ecol.202002019.