Мониторинг и характеристика культур Mycobacterium avium subsp. рaratuberculosis, выделенных на территории Западной Сибири

   Представлены результаты микробиологических исследований стандартизированного штамма и изолятов, относящихся к Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis (MAP), выделенных на территории Западной Сибири. Воспроизведена экспериментальная паратуберкулезная инфекция на нелинейных белых мышах с использованием внутрибрюшинного и внутривенного способов заражения опытными дозами 0,1; 0,25; 0,5 и 1,0 мл суспензии стандартизированного штамма и изолятов. Микробиологические исследования штамма и изолятов включали микроскопический, культуральный и биохимические методы: окраска мазков по Цилю – Нильсену; посевы суспензии микобактерий на плотную яичную питательную среду Левенштейна – Йенсена с фактором роста микобактином, предпосевной обработки биоматериала, полученного от лабораторных животных, с последующим посевом полученного осадка на яичные питательные среды с микобактином. Биохимические тесты: рост патогенов при 30, 37 и 42 ºC, определение амидазной активности; наличие роста колоний или его отсутствие на среде с салицилатом натрия, определение каталазной и арилсульфатазной активности, редукция нитратов, гидролиз твин-80, устойчивость к 5 %-му хлориду натрия. По результатам проведенных исследований изученные культуры отнесены к 3-й группе микобактерий по классификации Раньона. У мышей, зараженных 0,1; 0,25; 0,5 и 1,0 мл суспензии стандартизированного штамма и изолятами внутрибрюшинно, выявлены увеличение легких, селезенки и печени, единичные гнойные очаги на печени, селезенке и брыжейке. Индекс высеваемости составил (++) 2 – (+++) 3 – (++++) 4. У мышей, зараженных 0,1; 0,25; 0,5 и 1,0 мл суспензии стандартизированного штамма и изолятами внутривенно, выявлены увеличение легких, селезенки и печени, печень мраморной окраски, гнойные очаги в печени. Индекс высеваемости составил (++)2 – (+++) 3 – (++++) 4. Получены научные данные о культуральных, биохимических и биологических свойствах изолятов паратуберкулезных микобактерий, совпадающие с идентичными показателями стандартизированного штамма Mycobacterium avium subsp. рaratuberculosis, что позволяет отнести их к микобактериям паратуберкулеза. Биологический метод исследования на нелинейных белых мышах с использованием внутрибрюшинного и внутривенного способов заражения опытными дозами суспензий, содержащих стандартизированный штамм и изоляты возбудителя паратуберкулеза, позволил установить эффективность данных способов и доз для воспроизведения экспериментальной паратуберкулезной инфекции на нелинейных белых мышах.

1. Nielsena S. S., Toftb N. Ante mortem diagnosis of paratuberculosis: A review of accuracies of ELISA, interferon-γ assay and faecal culture techniques // Veterinary Microbiology. 2008. Vol. 129. Iss. 3–4. N 22. P. 217–235.

2. Whittington R. J. Progress towards under-standing the spread, detection and control of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis in animal populations // Australian Veterinary Journal. 2001. N 79 (4). P. 267–78.

3. Бинхун Х. Распространение и методы диагностики паратуберкулеза у крупного рогатого скота в России (обзорная статья) / Х. Бинхун // Успехи современной науки и образования. – 2016. – Т. 4. – № 6. – С. 135–141.

4. Fecteau M.-E. Paratuberculosis in Cattle // Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 2018. N 34 (1). P. 209–222. DOI: 10.1016/j.cvfa.2017.10.011.

5. Chaubey K. K., Gupta R. D., Gupta S., Singh S. V., Bhatia A. K., Jayaraman S., Kumar N., Goel A., Rathore A. S., Sohal J. S., Stephen B. J., Singh M., Goyal M., Dhama K., Derakhshandeh A. Trends and advances in the diagnosis and control of paratuberculosis in domestic livestock // Vet Q. 2016. N 36 (4). P. 203–227. DOI: 10.1080/01652176.2016.1196508.

6. Jones R. L. Review of the economic impact of Johne's disease in the United States. In A. R. Milner and P. R. Wood (ed.), Johne's disease. Current trends in research, diagnosis and management // Commonwealth Scientific and Industrial Research Organization. Australia, Melbourne, 1989. P. 46–50.

7. Griffin J. F. T. The aetiology of tuberculosis and mycobacterial diseases in farmed deer // Veterinary Journal. 1988. N 42. P. 23–26.

8. Hamilton H. L., Cooley A. J., Adams J. L., Czuprynski C. J. Mycobacterium paratuberculosis mono associated nude mice as a paratuberculosis model // Veterinary Pathology. 1991. N 28. P. 146–155.

9. Mokresh A. H., Czuprynski C. J., Butler D. G. A rabbit model for study of Mycobacterium paratuberculosis infection // Infection and Immunity. 1989. N 57. P. 3798–3807.

10. Britton L. E., Cassidy J. P., O'Donovan J., Gordon S. V., Markey B. Potential application of emerging diagnostic techniques to the diagnosis of bovine Johne's disease (paratuberculosis) // Veterinary Journal. 2016. N 209. P. 32–39. DOI: 10.1016/j.tvjl.2015.10.033.

11. Thoen C. O., Baum K. H. Current knowledge on Paratuberculosis // Journal of the American Veterinary Medical Association. 1988. Vol. 192. N 4. P. 1609–1642.

12. Hasonova L., Pavlik I. Economic impact of paratuberculosis in dairy cattle // Journal of Veterinary Medical Science. 2006. N 51. P. 193–211.

13. Лазовская А. Л. Патогенные и условно-патогенные микобактерии: монография / А. Л. Лазовская. – Горький: Волго-Вятское книжное издательство, 1976. 116 с.

14. Завгородний А. И. Изучение ростовой активности культур Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis, изолированных от коров с латентной и клиническими формами паратуберкулеза / А. И. Завгородний, С. А. Позмогова, Н. В. Калашник // Эпизоотология, иммунобиология, фармакология и санитария. – 2019. – № 2. – С. 14–20.