Ветеринарное обеспечение табунного коневодства: проблемы и пути решения

Представлены разработанные иммунобиологические препараты для профилактики инфекционных болезней лошадей табунного содержания. Инфекционные болезни лошадей регистрируют почти во всех странах Азии, Европы и Америки. В России, Казахстане, Киргизии и Монголии наиболее распространенными болезнями являются мыт, ринопневмония и сальмонеллезный аборт, которые наносят значительный экономический ущерб табунному коневодству. В зарубежных странах разрабатывают и производят различные моновакцины, большинство из них применения в России не имеют. Нами установлено одновременное заболевание кобыл ринопневмонией и сальмонеллезом, а также молодняка лошадей ринопневмонией, сальмонеллезом и мытом. В связи с этим актуальной проблемой становится разработка моновакцин и комбинированных иммунобиологических препаратов. Иммуногенность инфекционных вакцин следует усиливать иммуномодуляторами, особенно в экстремальных условиях ведения табунного коневодства. В период проблемы появления антибиотикорезистентных штаммов микроорганизмов следует разрабатывать альтернативные антибактериальные средства: пробиотики и бактериофаги. Выделены, идентифицированы и депонированы во всероссийских коллекциях восемь новых штаммов микроорганизмов. Разработан пробиотик Сахабактисубтил, который используют для профилактики и лечения дисбактериозов, микотоксикозов, мыта, лептоспироза, обеззараживания навоза. Разработаны новые эффективные вакцинные препараты и закваска «Якутская кумысная», которые можно успешно использовать для повышения продуктивности коневодства в других субъектах Российской Федерации и за рубежом. Подготовлена научно-техническая документация на инактивированную вакцину против ринопневмонии, комбинированные двух и трехвалентные вакцины. Разработанные иммунобиологические препараты защищены 48 патентами на изобретение и могут быть использованы в других странах.

1. Grandolfo E., Parisi A., Ricci A., Lorusso E., Siena R., Trotta A., Buonavoglia D., Martella V., Corrente M. High mortality in foals associated with Salmonella enterica subsp. enterica Abortusequi infection in Italy // Journal of Veterinary Diagnostic. 2018. Vol. 30 (3). P. 483–485. DOI: 10.1177/1040638717753965.

2. Boyle A.G., Timoney J.F., Newton J.R., Hines M.T., Waller A.S. Streptococcus equi Infections in horses: guidelines for treatment, control, and prevention of strangles-revised consensus statement // Journal of Veterinary Internal Medicine. 2018. Vol. 32. P. 633–647. DOI: 10.1111/jvim.15043.

3. Неустроев М.П. Разработка иммунобиологических препаратов при мыте лошадей: монография. Новосибирск: «СибАК». 2022. 218 с.

4. Неустроев М.П., Петрова С.Г., Ордахов И.А. Сальмонеллезный аборт лошадей: Этиология, эпизоотология, меры борьбы, профилактика: монография. Новосибирск: «СибАК», 2019. 104 с.

5. Minoru O., Hiroshi B., Manabu N., Yoshinori K., Norihisa T., Koji T. Antibody Responses Against Equine Influenza Virus Induced by Concurrent and by Consecutive Use of an Inactivated Equine Influenza Virus Vaccine and a Modified Live Equine Herpesvirus Type 1 Vaccine in Thoroughbred Racehorses // Journal of Equine Veterinary Science. 2020. Vol. 94. DOI: 10.1016/j.jevs.2020.103221.

6. Ameer K., Chirom A., Raymundo R.R.C., Alberto B.P. Equine Herpesvirus-I Infection in Horses: Recent Updates on its Pathogenicity, Vaccination, and Preventive Management Strategies // Journal of Equine Veterinary Science. 2020. Vol. 87. P. 102923. DOI: 10.1016/j.jevs.2020.102923.

7. Laval K., Poelaert K.C.K., Van Cleemput J., Zhao J., Vandekerckhove A.P., Gryspeerdt A.C., Garré B., vander Meulen K., Baghi H.B., Dubale H.N., Zarak I., Van Crombrugge E., Nauwynck H.J. The Pathogenesis and Immune Evasive Mechanisms of Equine Herpesvirus Type 1 // Frontiers in Microbiology. 2021. Vol. 12. P. 662– 686. DOI: 10.3389/fmicb.2021.662686.

8. Kim J.W., Jung J.Y., Lee K., Lee H., Kim H.Y., Yoon S.S., So B.J., Choi E. A case of Streptococcus equi subspecies zooepidemicus infection in a thoroughbred horse // Comparative Pathology. 2018. Vol. 158. Р. 137. DOI: 10.1016/j.jcpa.2017.10.133.

9. Tscheschlok l., Venner M., Steward R., Böse R., Riihimäki M., Pringle J. Decreased Clinical Severity of Strangles in Weanlings Associated with Restricted Seroconversion to Optimized Streptococcus equi ssp equi Assays // Journal of Veterinary Internal Medicine. 2018. Vol. 32 (1). P. 459–464. DOI: 10.1111/jvim.15037.

10. Boyle A.G., Mitchel C., Stefanovski D., Waller A.S. Horses vaccinated with live attenuated intranasal strangles vaccine seroconvert to SEQ2190 and SeM // Equine Veterinary Journal. 2021. Vol. 54 (2). P. 299–305. DOI: 10.1111/evj.13443.

11. Pringle J., Storm E., Waller A., Riihimäki M. Influence of penicillin treatment of horses with strangles on seropositivity to Streptococcus equi ssp. equi-specific antibodies // Journal of Veterinary Internal Medicine. 2020. Vol. 34 (1). P. 294–299. DOI: 10.1111/jvim.15668.