Микробиологическое и генетическое типирование атипичных микобактерий, выявленных на территории Новосибирской области

Для изоляции возбудителя туберкулеза, микробиологического и генетического типирования выделенных культур атипичных микобактерий исследованы 219 проб биологического материала животных и 54 пробы объектов внешней среды с территории хозяйств Новосибирской области, благополучных по туберкулезу крупного рогатого скота. Микробиологическая диагностика включала культуральный метод, биохимические тесты и постановку биологической пробы. При обработке биоматериала животных выделено 50 культур, из объектов внешней среды – 20. Выделенные культуры на основе их культурально-морфологических свойств и бактериоскопии отнесены к микобактериям. По биохимическим характеристикам из 70 изученных культур 27 изолятов (38,6%) принадлежали к атипичным микобактериям различных видов. Из них 26 культур (96,3%) отнесены к III группе, 1 культура (3,7%) – к IV группе согласно классификации Раньона. Осуществлена постановка биологической пробы инфицированием нелинейных белых мышей суспензиями 27 идентифицированных культур атипичных микобактерий. При вскрытии и патолого-анатомическом изучении лабораторных животных характерные для туберкулеза изменения во внутренних органах не обнаружены, что подтверждает принадлежность исследуемых культур к атипичным микобактериям. В результате молекулярной систематизации изолированных культур установлено наличие Mycobacterium avium (20 культур, 74%), M. nonchromogenicum (5 культур, 18,5%), M. intracellulare (1 культура, 3,7%) и M. fortuitum (1 культура, 3,7%). Таким образом, по итогам комплексного изучения 70 культур атипичных микобактерий, изолированных из биоматериала животных и объектов внешней среды с территории хозяйств Новосибирской области, благополучных по туберкулезу крупного рогатого скота, выявили 27 изолятов, принадлежащих к атипичным микобактериям III и IV групп соглассно классификации Раньона. На основе типирования установлено, что ведущую роль среди идентифицированных патогенов занимают атипичные микобактерии III группы, в частности M. avium. Этиологию неспецифических туберкулиновых реакций в благополучных по туберкулезу стадах крупного рогатого скота можно объяснить изоляцией из объектов внешней среды и персистированием в организме здоровых животных атипичных микобактерий туберкулеза III и IV групп согласно классификации Раньона.

1. Parte A.C., Carbasse J.S., Kolthoff J.P.M., Reimer L.C., Göker M. List of Prokaryotic names with Standing in Nomenclature (LPSN) moves to the DSMZ // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2020. Vol. 70. N 11. P. 5607–5612. DOI: 10.1099/ijsem.0.004332.

2. Varela-Castro L., Barral M., Arnal M.C., de Luco D.F., Gortázar C., Garrido J.M., Sevilla I.A. Beyond tuberculosis: Diversity and implications of non-tuberculous mycobacteria at the wildlife-livestock interface // Transboundary and Emerging Diseases. 2022. Vol. 69. N 5. P. 2978–2993. DOI: 10.1111/tbed.14649.

3. Макарова М.В., Гунтупова Л.Д. Нетуберкулезные микобактерии // Биопрепараты: профилактика, диагностика, лечение. 2020. Т. 20. № 2. С. 97–102.

4. Pereira A.C., Ramos B., Reis A.C., Cunha M.V. Non-tuberculous Mycobacteria: molecular and physiological bases of virulence and adaptation to ecological niches // Microorganisms. 2020. Vol. 8. N 9. P. 13–80. DOI: 10.3390/microorganisms8091380.

5. Varela-Castro L., Torrontegi O., Sevilla I.A., Barral M. Detection of wood mice (Apodemus sylvaticus) carrying non-tuberculous mycobacteria able to infect cattle and interfere with the diagnosis of bovine tuberculosis // Microorganisms. 2020. Vol. 8. N 3. P. 3–74. DOI: 10.3390/microorganisms8030374.

6. Saxena S., Spaink H.P., Forn-Cuní G. Drug resistance in non-tuberculous Mycobacteria: mechanisms and models // Biology (Basel). 2021. Vol. 10. N 2. p. 96. DOI: 10.3390/biology10020096.

7. Buendia A.G., Alvarez J., Bezos J., Mourelo J., Amado J., Saez J.L., de Juan L., Romero B. Nontuberculous mycobacteria: occurrence in skin test cattle reactors from official tuberculosisfree herds // Frontierst in Veterinary Science. 2024. N 11. P. 1361–1788. DOI: 10.3389/fvets.2024.1361788.

8. Hernández-Jarguín A.M., Martínez-Burnes J., Molina-Salinas G.M., de la Cruz-Hernández N.I., Palomares-Rangel J.L., Mayagoitia A.L., Barrios-García H.B. Isolation and histopathological changes associated with non-tuberculous Mycobacteria in lymph nodes condemned at a bovine slaughterhouse // Veterinary Science. 2020. Vol. 7. N 4. P. 1–72. DOI: 10.3390/vetsci7040172.

9. Slathia P., Narang D., Chandra M., Sharma A., Narang A. Detection of non-tuberculous mycobacterial species using PCR-RFLP analysis in trans-tracheal washes in cattle and buffaloes with respiratory distress // Iranian Journal of Veterinary Research. 2020. Vol. 21. N 2. P. 136–140.

10. Камалиева Ю.Р., Мингалеев Д.Н., Равилов Р.Х. Идентификация микобактерий нетуберкулезного типа, изолированных с объектов внешней среды в Республике Татарстан // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2021. Т. 248. № 4. С. 100–105.

11. Lorente-Leal V., Liandris E., Pacciarini M., Botelho A., Kenny K., Loyo B., Fernández R., Bezos J., Domínguez L., de Juan L., Romero B. Direct PCR on Tissue Samples To Detect Mycobacterium tuberculosis complex: an alternative to the bacteriological culture // Journal of Clinical Microbiology. 2021. Vol. 59. N 2. P. 1404–1420. DOI: 10.1128/JCM.01404-20.

12. Суркова Л.К., Залуцкая О.М., Николенко Е.Н., Стринович А.Л., Богуш Л.С. Распространение разных видов нетуберкулезных микобактерий среди пациентов с заболеваниями легких за период 2014–2021 гг. // БГМУ в авангарде медицинской науки и практики. 2022. Вып. 12. Т. 1. С. 410–414.

13. Ионина С.В., Донченко А.С. Идентификация микобактерий, изолированных из биоматериала животных и объектов внешней среды на территории Западной Сибири // Ветеринария и кормление. 2023. № 4. С. 35–38.