СРАВНИТЕЛЬНОЕ ИЗУЧЕНИЕ ДВУХ МЕТОДОВ СЕРОЛОГИЧЕСКОЙ ДИАГНОСТИКИ ИНФЕКЦИОННОГО РИНОТРАХЕИТА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА

Представлены сравнительные результаты качественного и количественного исследования проб сыворотки крови от инфицированных вирусом инфекционного ринотрахеита животных двумя методами серологической диагностики: реакцией нейтрализации и иммуноферментным анализом. С 2013 по 2015 г. исследовали 246 проб сыворотки крови от животных из семи хозяйств различных регионов Российской Федерации: Тюменской области, Красноярского и Алтайского краев, а также Республики Казахстан. Статистический анализ показал низкую степень согласованности результатов использованных методов. Коэффициент Каппа составил 0,27. Диагностическая чувствительность и специфичность иммуноферментного анализа в сравнении с реакцией нейтрализации составили 99,5 и 18,7 % соответственно. Не установлена корреляция между значениями титров антител в реакции нейтрализации и количеством блокировки в иммуноферментном анализе. Это свидетельствует о том, что использованный коммерческий набор ИФА позволяет выявить наличие антител у инфицированных вирусом животных, но не дает четкой возможности проведения количественного анализа и интерпретации полученных результатов. Применение иммуноферментного анализа целесообразно при проведении массовых («скрининговых») исследований с целью выявления инфицированных вирусом животных. Реакция нейтрализации дает возможность не только выявить инфицированных животных, но и установить величину титров специфических антител, что позволяет судить о характере инфекционного процесса.

герпесвирус крупного рогатого скота 1-го типа, серопозитивность, реакция нейтрализации, иммуноферментный анализ

1. Raaperi K., Orro T., Viltrop A. Epidemiology and control of bovine herpesvirus 1 infection in Europe // The Veterinary J. - 2014. - Vol. 201, N 3. - P. 249-256.

2. Глотов А.Г., Шуляк А.Ф., Глотова Т.И. и др. Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота. - Новосибирск, 2006. - 196 с.

3. King A.M., Lefkowitz E., Adams M.J. et al. Virus Taxonomy: Ninth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses. - San Diego: Academic Press. - 2011. - P. 106.

4. Davison A.J. Herpesvirus systematic // Vet. Microbiol. - 2010. - Vol. 143. - Р. 52-69.

5. Крюков Н.Н. Инфекционный ринотрахеит - пустулезный вульвовагинит крупного рогатого скота // Животноводство и ветеринария. - 1980. - С. 32-113.

6. Мищенко В.А. Проблема борьбы и профилактики инфекционного ринотрахеита - инфекционного пустулезного вульвовагинита крупного рогатого скота // Ветеринария Кубани. - 2012. - № 6. - С. 3-5.

7. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals (Mammals, Birds and Bees). Seventh edition. OIE. Paris. - 2012. - Vol. 1. - Chapter 2.4.13. - P. 745-761.

8. Глотов А.Г., Петрова О.Г., Глотова Т.И. и др. Распространение вирусных респираторных болезней крупного рогатого скота // Ветеринария. - 2002. - № 3. - С. 17-21.

9. Глотов А.Г., Глотова Т.И., Нефедченко А.В. и др. Этиологическая структура массовых респираторных болезней молодняка крупного рогатого скота в хозяйствах, занимающихся производством молока // Сиб. вестн. с.-х. науки. - 2008. - № 3. - С. 72-78.

10. Biswas S., Bandyopadhyay S., Dimri U.H., Patra P. Bovine herpesvirus-1 (BHV-1) - a re-emerging concern in livestock: a revisit to its biology, epidemiology, diagnosis, and prophylaxis // Vet Quarterly. - 2013. - Vol. 33. - P. 68-81.

11. Muylkens B., Thiry J., Кirten P. et al. Bovine herpesvirus 1 infections and infectious bovine rhinotracheitis // Vet. Res. - 2007. - Vol. 38. - P. 181-209.

12. Nandi S., Kumar M., Manohar M., Chauhan R.S. Bovine herpes virus infections in cattle // Animal Health Res. Rev. - 2009. - Vol. 10. - P. 85-98.

13. Viera A.J., Garrett J.M. Understanding Interobserver Agreement: The Kappa Statistic // Family Medicine. - 2005. - Vol. 5, N 37. - P. 360-363.

14. Nandi S., Kumar M. Comparison of ELISA and virus neutralization test in assaying serum antibodies to bovine herpesvirus 1 // Acta virologica. - 2011. - Vol. 55. - P. 175-177.

15. Thrushfield M. Veterinary epidemiology/ Blackwell Science Ltd. U.K. 3rd edn. - 2005. - P. 305-330.

16. Kramps J.A., Magdalena J., Quak J. et al. A Simple, Specific, and Highly Sensitive Blocking Enzyme-Linked Immunosorbent Assay for Detection of Antibodies to Bovine Herpesvirus 1 // J. of Clin. Microbiol. - 1994. - Vol. 32, N 9. - P. 217-218.

17. Levings R.L., Collins J.K., Patterson P.A., Roth J.A. Virus, strain, and epitope specificities of neutralizing bovine monoclonal antibodies to bovine herpesvirus 1 glycoproteins gB, gC and gD, with sequence and molecular model analysis // Vet Immunol Immunopathol. - 2015. - Vol. 164 (3-4). - P. 179-193.